货号: | D2300 |
CAS号: | 见说明 |
供应商: | 索莱宝 |
数量: | 现货 |
英文名: | 见说明 |
保质期: | 三年 |
保存条件: | 低温保存 |
规格: | 50T |
真菌基因组 DNA 提取试剂盒说明书
货号:D2300
规格:50T/ 100T
保存:室温(15℃-25℃) 干燥保存,复检期 12 个月,2℃-8℃保存时间更长。
试剂盒内容: 50T 100T
RNase A 1ml 1ml×2
蛋白酶 K 1ml 1ml×2
玻璃珠 6g 11g
溶液 A 10ml 20ml
溶液 B 10ml 20ml
漂洗液 15ml 15ml×2
洗脱液 10ml 20ml
吸附柱 50 个 100 个
收集管 50 个 100 个
说明书 1 份 1 份
产品简介:
真菌是具有真核和细胞壁的异养生物。种属很多,已报道的属达 1 万以上,种超过 10 万个。真菌通常又
分为三类,即酵母菌、霉菌和蕈菌(大型真菌)。对于酵母菌和霉菌,可以用玻璃珠处理,而对于大型真菌,可
直接用液氮研磨。经过前期处理的菌液,用硅质膜吸附,即可得到高纯度的基因组。提取纯化后的 DNA,可以
直接用于 PCR/Real time-PCR,sequencing,Southern blot,mutant analysis,SNP 等下游应用实验。
操作步骤:
使用前请先在漂洗液中加入无水乙醇,加入体积请参照瓶体上的标签。所有离心步骤均为使用台式离心机
在室温下离心。
1、样品的处理:
1)对于酵母菌,取 1-2ml 培养好的菌液,离心收集,弃上清。加入 200ul 溶液 A,加入 20ul RNase A,再
加入 100mg 玻璃珠,在高速振荡器上振荡,约 5-10min。
2)霉菌(孢子也可相同处理):取 50-100mg 菌丝,加 200ul 溶液 A,用玻璃研磨器适当研磨分散菌丝,加
入 20ul RNase A,再加入 100mg 玻璃珠,在高速振荡器上振荡,约 30min。
3)大型真菌(如蘑菇等):称取 50-100mg 样品,倒入适量的液氮,立即研磨重复 3 次,使样品研成粉末
(如无液氮,可加 200ul 溶液 A 后用玻璃研磨器适当研磨),加 200ul 溶液 A,加入 20ul RNase A,再加入 100mg
玻璃珠,在高速振荡器上振荡,约 5min。
2、加入 20ul 10mg/ml 的蛋白酶 K,充分混匀,55℃水浴消化,30min。消化期间可颠倒离心管混匀数次,12000rpm
离心 2min。将上清转移到一个新的离心管中。如有沉淀,可再次离心。
3、在上清中加入 200ul 溶液 B,充分混匀。如出现白色沉淀,可放 55℃水浴 5min,沉淀即会消失,不影响后
续实验。如溶液未变清亮,说明样品消化不彻底,可能导致提取的 DNA 量少及不纯,还有可能导致上柱后堵
柱子,请增加消化时间。
4、再加入 200ul 无水乙醇,充分混匀,此时可能会出现絮状沉淀,不影响 DNA 的提取,将溶液和絮状沉淀都
加入吸附柱中,放置 2 分钟。
5、12000rpm 离心 1min,弃废液,将吸附柱放入收集管中。
6、向吸附柱中加入 700ul 漂洗液(使用前请先检查是否已加入无水乙醇),12000rpm 离心 1min,弃废液,将吸
附柱放入收集管中。
7、向吸附柱中加入 500ul 漂洗液,12000rpm 离心 1min,弃废液,将吸附柱放入收集管中。
8、12000rpm 离心 2min,将吸附柱置于室温或 50℃温箱放置数分钟,目的是将吸附柱中残余的漂洗液去除,否
则漂洗液中的乙醇会影响后续的实验如酶切、PCR 等。
9、将吸附柱放入一个干净的离心管中,向吸附膜中央悬空滴加 50-200ul 经 65℃水浴预热的洗脱液,室温放置
5min,12000rpm 离心 1min。
10、离心所得洗脱液再加入吸附柱中,室温放置 2min,12000rpm 离心 2min,即可得到高质量的基因组 DNA。
注意事项:
1. 由于真菌种类万千,对于一些特别难处理的真菌,可用液氮研磨,再用玻璃珠振荡,蛋白酶K处理,一般都
可以得到一定量的基因组DNA,如电泳检测很弱,一般PCR都会有较好结果。
2. 若溶液A或溶液B中有沉淀,可在 55℃水浴中重新溶解。
3. 如果DNA提取量很少,可加长玻璃珠处理时间,如果提取DNA成弥散短条带,可减少玻璃珠处理时间。
4. 洗脱缓冲液的体积最好不少于 50ul,体积过小会影响回收效率;洗脱液的pH值对洗脱效率也有影响,若需要
用水做洗脱液应保证其pH值在 8.0 左右(可用NaOH将水的pH值调至此范围),pH值低于 7.0 会降低洗脱效率;
DNA产物应保存在-20℃,以防DNA降解。
5. DNA浓度及纯度检测:得到的基因组DNA片段的大小与样品保存时间、操作过程中的剪切力等因素有关。回
收得到的DNA片段可用琼脂糖凝胶电泳和紫外分光光度计检测浓度与纯度。DNA应在OD260处有显著吸收峰,
OD260值为 1 相当于大约 50 μg/ml双链DNA、40 μg/ml单链DNA。OD260/OD280比值应为 1.7-1.9,如果洗脱时不使
用洗脱缓冲液,而使用去离子水,比值会偏低,因为pH值和离子存在会影响光吸收值,但并不表示纯度低。
6. 在确保样品无误的情况下,如经过多次试验,都无法提出DNA,请将部分样品寄至我公司,我们代为摸索优
化条件,以使您的实验能够正常进行下去。
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