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SiMax II PCR产物纯化及胶回收试剂盒

产品价格: ¥150.00

最小起订量:暂无 可售数量:999盒

发货时限:
暂无
所在地区:
中国北京
有效期至:
长期有效
最后更新:
2021-04-20 01:30:02
浏览次数:
41

产品详情

品牌名称:
北京赛百盛
货号: CSB2-50
保存条件: 室温保存
供应商: 北京赛百盛基因技术有限公司
保质期: 一年

 

SiMax IITMPCR产物纯化及胶回收试剂盒

使用说明

 

 

概述

本实验方法的基本原理是,在高盐、低pH值状态下,硅胶膜专一性地吸附DNA;而在低盐或水溶液状态下,DNA被洗脱下来。此法简便快捷,不仅用于从琼脂糖凝胶中纯化回收目的DNA片段,也可用于PCR反应液的纯化、各种酶反应体系中DNA片段的纯化、标记探针的回收及DNA样品的浓缩,整个过程只需几分钟,适用范围从300bp到十几kb。500b上的片段,回收率达90%左右;300bp-500bp回收率达80%左右。

 

试剂盒包装及组成

 

50次
1.  GP结合液                                     50ml
2.  洗脱液                                          2.5ml
3. 离心纯化柱S                                 50套
4. 产品说明书                                    1份
 

 

实验前注意事项

※室温低于25℃时,溶液可能出现结晶或盐析,此时请务必预热,使其完全溶解后使用。

 

用户自备的仪器及试剂

1. 台式高速离心机
2. 1.5ml或2ml离心管及离心管架
3. 100µl、1000µl移液器及吸头
4. 80%异丙醇或80%乙醇
 

 

操作方法

一、从琼脂糖中纯化/回收DNA片段
1.切取含DNA片段的琼脂糖后捣碎,按重量/体积比1:3(琼脂糖重量:GP结合液的体积)加入GP结合液。如200mg琼脂糖加600ul GP结合液。
将切取的琼脂糖捣碎有利于加速下一步凝胶的融化。
2. 50~60ºC水浴10分钟,胶完全融化即可,其间可上下颠倒2~3次。
3.将溶液转入离心纯化柱中,静置5分钟使DNA充分与硅胶膜结合,10,000rpm离心2分钟,倒掉收集管中的废液。
适当增加DNA与硅胶膜结合的时间,使DNA与硅胶膜充分结合,能在一定程度上提高回收率。
4. 加入750µl的80%异丙醇(或80%乙醇)于离心纯化柱中,10,000rpm离心1分钟,倒掉收集管中的废液。
5. 重复步骤4。
6. 10,000rpm再次离心1分钟,尽量除去残余异丙醇或乙醇。
7. 将离心纯化柱置于新的离心管中,开盖放置2~3分钟,使异丙醇或乙醇挥发殆尽。
一定使异丙醇或乙醇挥发干净,否则影响其回收率及纯度。
8. 加入30~50µl洗脱液或无菌超纯水,静置3~5分钟,使洗脱液充分将硅胶膜浸透。
洗脱液或超纯水的用量视用户对DNA浓度的要求而定。将洗脱液或超纯水50ºC预热对提高回收率有一定帮助,但超纯水的洗脱效率不如专门的洗脱液。
9. 10,000rpm离心2分钟,管底溶液即为所需的DNA。将DNA贮存于-20ºC可长期保存。
离心柱放入离心管中,若盖不上盖子,亦没有关系,可开盖离心。
 
二、从溶液中回收DNA片段
1. 往无石蜡油的PCR反应液或其它酶反应液(50~100µl)中加入3倍体积的GP结合液,颠倒混匀。然后将混和液转入离心纯化柱,静置至少5分钟, 使DNA充分与硅胶膜结合。10,000rpm离心2分钟,倒掉收集管中的废液。
适当增加DNA与硅胶膜结合的时间,使DNA与硅胶膜充分结合,能在一定程度上提高回收率。
2. 加入750µl的80%异丙醇(或80%乙醇)于离心纯化柱中,10,000rpm离心2分钟,倒掉收集管中的废液。
3. 重复步骤2。
4. 10,000rpm再次离心1分钟,尽量除去残余异丙醇或乙醇。
5. 将离心纯化柱置于新的离心管中,开盖放置2~3分钟,使异丙醇或乙醇挥发殆尽。
一定使异丙醇或乙醇挥发干净,否则影响其回收率及纯度。
6. 加入40~50µl洗脱液或无菌超纯水,静置3~5分钟,使洗脱液充分将硅胶膜浸透。
洗脱液或超纯水的用量视用户对DNA浓度的要求而定。将洗脱液或超纯水50ºC预热对提高回收率有一定帮助,但超纯水的洗脱效率不如专门的洗脱液。
7. 10,000rpm离心2分钟,管底溶液即为所需的DNA。将DNA贮存于-20ºC可长期保存。
离心柱放入离心管中,若盖不上盖子,亦没有关系,可开盖离心。
 
 
常见问题及参考意见

 

常见问题

可能原因 参考意见
回收率低 洗脱液pH<7.0 用洗脱液或pH>7.0的无菌超纯水洗脱
洗脱温度过低 加入50℃温育的无菌超纯水或TE浸透硅胶膜
回收片段过大或过小 最适宜的回收片段为100bp~5Kb
对于小于100bp的小片段,增大GP结合液的比例
回收的DNA片段在后续实验中出现问题(例如连接失败) 盐的浓度过高 用80%乙醇漂洗回收产物
增加漂洗次数
残留有有机试剂 增加离心时间,将80%乙醇或异丙醇去除干净
部分双链DNA变性为单链DNA
 
在进行后续酶反应时,加入除酶以外的其它成份,95℃加热2分钟,缓慢冷却至室温(25℃以下),使单链DNA重新退火为双链DNA,然后加入酶,继续进行酶反应
用含有10mMNaCl的Tris  Buffer洗脱DNA片段。(注意:盐的浓度可能影响后续实验)

 
  
 

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温馨提示:不可用于临床治疗。

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