货号: | TB10012A |
CAS号: | 详情电联 |
供应商: | 上海同科生物科技有限公司 |
数量: | 100000000 |
英文名: | TonkBio Quick-Fusion Cloning Kit |
保质期: | 详见包装盒 |
保存条件: | 储存于-20℃ |
规格: | 10 rxns/50 rxns/100 rxns |
产品名称:TonkBio 同源重组试剂盒
英文名称:TonkBio Quick-Fusion Cloning Kit
产品规格:
TB10012A | 10 rxns | ¥441 |
TB10012B | 50 rxns | ¥900 |
TB10012C | 100 rxns | ¥1530 |
产品组成:
1、Fast-Fusion Enzyme
2、10× Fast-Fusion Buffer
产品简介:
TonkBio 同源重组试剂盒基于DNA序列同源性进行片段重组,可将插入片段PCR产物定向克隆至任意载体的任意位点。将载体在克隆位点进行线性化,并在插入片段PCR引物5’端引入线性化克隆载体末端序列,使得插入片段PCR产物5’和3’最末端分别带有和线性化克隆载体两末端对应的完全一致的序列 (15 bp~21 bp)。这种两端带有载体末端序列的PCR产物和线性化克隆载体按一定比例混合后,在Fast-Fusion Enzyme的催化下,最快仅需反应5 min,即可进行转化,完成定向克隆。克隆阳性率可达95%以上。
产品特点:
1、操作简便:无需考虑酶切点限制;
2、快速重组:15min实现载体和片段的快速重组;
3、效率更高:重组效率为传统酶切连接技术的5-10倍,无载体自连现象,阳性克隆可达90%以上。
产品应用:
1、PCR产物克隆进载体
2、基因转移
3、在插入片段前后插入adaptor、linker和标签
4、高通量克隆
实验方案
A.实验流程概览
B.制备线性化载体
环形载体需要经过线性化处理,使载体待重组区域暴露出来,以供与插入片段进行重组拼接。线性化的方法可以通过限制性内切酶酶切或PCR方法实现。若采用酶切进行线性化处理,推荐进行琼脂糖凝胶电泳检测,并切胶回收,以尽量避免为切割载体在转化后造成假阳性结果。若PCR扩增得到线性化载体,推荐使用高保真聚合酶进行扩增,减少PCR体系中的模板用量以减少初始质粒造成的假阳性,并在PCR结束后对产物进行切胶回收或使用DpnI酶消化残余质粒模板。
C. 插入片段的PCR引物设计
为了实现同源重组,插入片段扩增产物5’和3’末端需要带有和线性化克隆载体两个末端对应的完全一致的序列(15−21 bp)。下图以pUC19作为克隆载体为例,设计引物:
Forward Primer → | ||
15 bp tract (F) BamHI Gene-specific Primer | ||
5’-CAG GTC GAC TCT AGA GGATCC XXX XXX …-3’ | ||
Vecor pUC19 Clone site | 5’-TGC CTG CAG GTC GAC TCT AGA G | AATTC ACT GGC CGT CGT TTT ACA ACG-3’ |
3’-ACG GAC GTC CAG CTG AGA TCT CCTAG | G TGA CCG GCA GCA AAA TGT TGC-5’ | |
3’-… XXX XXX CTTAAG TGA CCG GCA GCA AAA-5’ | ||
Gene-specific Primer EcoRI 15 bp tract (R) | ||
← Reverse Primer |
插入片段可选用任何DNA聚合酶进行扩增,Taq DNA聚合酶或其他具有校正活力的高保真酶都可以。若用Taq DNA聚合酶,产物末端的A尾在重组过程中将会被去除,不会因此产生单碱基插入突变。推荐使用高保真酶进行扩增,以减少在插入片段中引入突变。请在PCR完成后,进行琼脂糖凝胶电泳,确认获得单一条带的DNA片段。可切胶回收以除去模板、引物、引物二聚体。可通过与已知的DNA分子量marker比较,确定得到的DNA量。
E.重组反应体系的建立以及反应条件
在冰水浴中,配制如下反应体系,将缓冲、水、线性化载体、插入片段加入PCR管中,轻弹混匀,最后加入酶。
组成成分 | 用量 |
10× Fast-Fusion Buffer | 1 μl |
线性化载体 | 20−100 ng |
插入片段 | 10−100 ng |
ddH2O | 补加至10 μl |
Fast-Fusion Enzyme | 1 μl * |
Ø 线性化载体 = [0.01 × 线性化载体长度 (bp)] ng
Ø 插入片段 = [0.01 × 插入片段长度 (bp)] ng
例如将长度500 bp的插入片段克隆到长度2.7 kb的pUC19中,克隆载体的最适使用量为:0.01×2700=27 ng,插入片段的最适使用量为:0.02×500=10 ng。
注意:1. 当插入片段大于克隆载体时,两者计算用量公式应互换。
2. 线性化载体用量应在20−100 ng之间,插入片段扩增产物用量应在10−100 ng之间。当使用上述公式计算DNA用量超出这个范围是,请直接选择最低/最高使用量即可。例如插入片段200 bp,最适用量计算值为4 ng,实际反应体系中应加入10 ng。
反应体系配制完成后,轻弹混匀,并通过短暂离心使其沉到管底,立即放入已预热的PCR仪或平衡至所需温度的水浴中。按下表中方案选其一进行。推荐在PCR仪中进行反应,60°C,15 min。(若选择在37°C水浴反应,请在10 μl反应中加入2 μl Fast-Fusion Enzyme。)反应结束后应立即将反应管置于冰水浴中冷却10 min,然后直接转化。也可选择−20°C储存,待需要时,冰上解冻并转化。
PCR热循环仪 | 水浴 | |
70°C, 5 min | 60°C, 15 min | 37°C, 15 min |
4°C, ∞ | 4°C, ∞ | 冰水浴 |
F.转化
推荐使用转化效率≥108 cfu/μg的感受态细胞,按照对应的说明书操作。若转化效率低于108 cfu/μg,可在凃布前将培养的菌液在6000 rpm离心5 min,沉菌用100 μl培养基重悬后,全部涂于对应抗性的平板上。过夜培养后,形成数百个单克隆,可根据需要选择PCR或酶切鉴定是否为阳性。
G.常见问题与解决方案
问题 | 可能的原因 | 解决方案 |
平板上无克隆或克隆数目很少 | 引物序列不正确 | l 确认引物序列含有15 bp与载体插入区域完全一致的同源序列。 |
PCR产物不纯 | l 优化PCR扩增反应以得到单一PCR产物。 l 换一种纯化方法,纯化您的PCR产物。 | |
反应体系中DNA浓度太低 | l 在重组反应中,加入推荐的DNA量。 | |
不纯的载体或插入片段抑制重组反应 | l 推荐采用胶回收或离心柱法纯化DNA后进行重组反应。 | |
转化过程中加入重组反应液过多 | l 重组反应液的转化体积不应超过转化细胞体积的1/10。 | |
感受态细胞转化效率低 | l 更换新鲜、高效的感受态细胞。 | |
培养基中加入错误或过多抗生素 | l 在转化平板中加入正确、适量的抗生素。 | |
假阳性克隆数目多 | 克隆载体线性化不完全 | l 重新酶切您的载体,增加酶切时间,并胶回收纯化。 |
PCR使用的模板质粒抗性与所需克隆载体抗性相同造成的污染 | l 可在PCR反应之前先将模板质粒线性化。 l PCR产物用DpnI处理,消化模板质粒,然后再纯化。 | |
转化用平板放置时间过长导致抗性失效 | l 确认平板新鲜配置,并含有正确、适量的抗生素。 | |
克隆含有不正确的插入片段 | PCR产物混有非特异性片段 | l 优化PCR扩增体系,提高特异性或胶回收纯化目的片段。 |
生产科研:同科生物www.toneker.com搭建多个研发与合作技术平台(博士后实践基地、院士工作站、同济大学人才培养与产学研合作基地及生物研究中心等),为技术创新提供了坚实的基础保障。拥有三类体外试剂生产中心、仪器生产中心、研发质检实验室等、厂房和实验面积达8000多平米,仪器设备设施先进齐全(包括定量PCR仪、生物安全柜、核酸蛋白测定仪、高压细胞破碎仪、FPLC等系列高端精密仪器设备)。
研发团队:同科拥有一支由中科院院士为顾问,国家千人为首席科学家,以博士硕士为主体的高效的国际化研发团队。研发人员专业涵盖生物化学、分子生物学、临床医学、免疫学、药物制剂、生物技术、遗传学、微生物学、生物工程领域,关联性较大,专业结构合理,且形成互补,在重大项目及关键技术上具备卓越的攻关能力。
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