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细胞划痕实验/细胞功能检测
流式细胞检测
重组人EGF（Human EGF）
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罗氏公司（Roche）蛋| 提供商： | 嘉美实验 |
| 服务名称： | 细胞生物学：神经元细胞培养实验服务 |
实验技术简介：体外神经细胞的培养已成为神经生物学研究中十分有用的技术手段。 神经细胞培养的主要优点是:(1)分散培养的神经细胞在体外生长成熟后,能保持结构和功能上的某些特点, 而且长期培养能形成髓鞘和建立突触联系,这就提 供了体内生长过程在体外重现的机会。(2)能在较长时间内直接观察活细胞的生长、分化、形态和功能变化,便于使用各种不同的技术方法如相差显微镜、荧光显 微镜、电子显微镜、激光共聚焦显微镜、同位素标记、原位杂交、免疫组化和电生理等手段进行研究。(3)易于施行物理（如缺血、缺氧）、化学和生物因子（如 神经营养因子）等实验条件, 观察条件变更对神经细胞的直接或间接作用。(4)便于从细胞和分子水平探讨某些神经疾病的发病机制，药物或各种因素对胚胎或 新生动物神经细胞在生长、发育和分化等各方面的影响。
实验操作流程：
1、取材。脑则取出相应组织，在解剖液中先剪碎，以使胰酶消化。脊髓则固定于琼脂板上，用小刀将其要成背腹两侧，分别培养。
2、 细胞分离与接种。神经组织用0.125-0.25%胰蛋白酶在37℃孵育30min，移入接种液，停止消化，并洗去胰蛋白酶液，用细口吸管吹打细胞悬液， 使其充分分散，如此多次，待沉淀后吸出上层细胞悬液，计数，预置细胞密度，接种于培养皿（1×106），做电生理应为5×105或更低。
3、抑制胶质细胞生长。培养3-5d后，也有人认 为培养7d后，用阿糖胞苷，或5-FU抑制神经胶质细胞的生长。
4、观察。接种6-12h，开始贴壁，并有集合现象，细胞生长突起明显，5-7d胶质细胞增生明显，7-10d胶质细胞成片于神经细胞下面，形成地毯，2周时神经细胞生长最丰满，四周晕光明显，一个月后，有些神经细胞开始退化，变形，甚至出现空泡，一般培养2-4周最宜。
实验注意事项：
客户提供：
细胞建模的药品或试剂，细胞（可代购）
交付标准：
1、细胞
2、完整项目报告（材料、试剂、仪器、方法、数据分析、实验结果）
其他：
1、神经细胞只能增大，而不能增殖，只能原代，不能传代。
2、不会有细胞周期，而且随培养时间的延长，细胞数量在下降，但胶质细胞可以，神经胶质细胞也可以。
3、在培养过程中，早期9-12d时，有较多的神经细胞死亡，这是第一次死亡阶段，应注意保持条件的恒定。在此之后存活下去的细胞一般突起长而多，且相互形成突触。
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