细胞培养(MTT,Transwell,转染,RNAi干扰)
细胞增殖与毒性检测(MTT/CCK8)
MTT技术服务
四甲基偶氮唑盐比色法(MTT方法),是通过快速简便的颜色反应来检测细胞存活数量。其原理是MTT可作为哺乳类动物细胞线粒体中琥珀酸脱氢酶的底物。当有活细胞存在时,线粒体内琥珀酸脱氢酶可将淡黄色的MTT还原成蓝紫色的针状甲月替(Formazan)结晶并沉积在细胞中,结晶物能被二甲基亚砜 (DMSO)溶解,用酶联免疫检测仪在570nm波长处测定其吸光度OD值,OD值的高低可间接反映活细胞的数量及其活性。
目前MTT法常用于以下几个方面的研究:
1、检测细胞活性:常作为细胞毒性试验的一种方法。
2、体外药物敏感实验:该方法简便、经济、快速,重复性好,所需的细胞数较少,没有***性,目前广泛的用于临床前的抗癌药物的筛选研究。
3、一些细胞因子活性的研究
客户方需提供:
样本描述,相关的实验设计内容如作用时间和样本浓度等。
公司方提供:
实验结果IC50值。
实验周期与费用:
实验费用以样本数和细胞株的种类数目为单位计算,实验周期为21个工作日,公司将在材料和预付的实验经费全部到位的工作日后30个工作日之内提交实验结果。客户需在收到实验结果后一周内付清所有剩余款项。
收费标准:
每个样本,1株细胞的IC50值500元。
Transwell(迁移侵袭、共培养)
转染
常规转染技术可分为两大类,一类是瞬时转染,一类是稳定转染(永久转染)。前者外源DNA/RNA不整合到宿主染色体中,因此一个宿主细胞中可存在多个拷贝数,产生高水平的表达,但通常只持续几天,多用于启动子和其它调控元件的分析。一般来说,超螺旋质粒DNA转染效率较高,在转染后24-72小时内(依赖于各种不同的构建)分析结果,常常用到一些报告系统如荧光蛋白,β半乳糖苷酶等来帮助检测。后者也称稳定转染,外源DNA既可以整合到宿主染色体中,也可能作为一种游离体(episome)存在。尽管线性DNA比超螺旋DNA转入量低但整合率高。外源DNA整合到染色体中概率很小,大约1/104转染细胞能整合,通常需要通过一些选择性标记,如来氨丙基转移酶(APH;新霉素抗性基因),潮霉素B***酸转移酶(HPH),胸苷激酶(TK)等反复筛选,得到稳定转染的同源细胞系。
转染技术的选择对转染结果影响也很大,许多转染方法需要优化DNA与转染试剂比例,细胞数量,培养及检测时间等。一些传统的转染技术,如DEAE右旋糖苷法,***酸钙法,电穿孔法,脂质体法各有利弊,其主要原理及应用特点见下表:
RNAi干扰
RNA干扰(RNA interfering,RNAi)现象是由与靶基因序列同源的双链RNA引发的广泛存在于生物体内的序列特异性基因转录后的沉默过程。由于RNAi具有高度的序列专一性和有效的干扰,可以特异地将特定的基因沉默,从而获得基因功能丧失或基因表达量的降低,因此可以作为功能基因组学的一种强有力的研究工具。RNAi技术可广泛应用到包括功能学,药物靶点筛选,细胞信号传导通路分析,疾病治疗等等。我们可对靶基因序列进行干扰位置效应评价和序列同源型分析,完成siRNA/shRNA/miRNA等多种序列的设计,并提供从siRNA合成、RNAi载体构建到RNAi相关的病毒包装、RNAi功能验证等全面的RNAi解决方案。
※ RNAi服务类别
1、siRNA
对于瞬时基因沉默实验,化学合成siRNA的方法操作简便,容易获得高水平的瞬时沉默效果,特异性强。我们通过严格设计来增强siRNA的专一性;针对某靶基因设计的3条siRNA可保证其中两条的Knockdown效率达到70%(在转染效率大于80%的情况下)。
1.1 普通siRNA:均由HPLC纯化,100%除去尚未配对的单链
1.2 化学修饰siRNA:利用2’-Fluoro或2’-OMe修饰以提高siRNA在血清和培养基中的稳定性;作用时间长于普通siRNA
1.3 荧光标记siRNA
2、RNAi载体
RNAi载体表达可以长时间稳定地研究基因功能,载体在细胞中持续抑制靶基因的表达可达数星期甚至更久。
miR-RNAi载体构建-利用细胞内源性的miRNA加工机制,相比传统shRNA载体可更高效地表达RNA发夹结构,并具有采用EmGFP进行表达追踪和顺式表达多个miRNA的优点。针对人类、大鼠、小鼠的大多数基因预先设计好了miRRNAi序列,每个基因设计的4条 miRRNAi Select序列我们保证至少有2条可以达到至少70%转录水平的knockdown(在转染效率>80%的前提下)。
2.2 shRNA载体构建—设计针对特定基因的shRNA序列,并将其连入组成型pENTR™/U6或诱导型pENTR™/H1/TO载体中。
3、RNAi导入优化
由于siRNAs是进入细胞后才能对蛋白的表达进行抑制,因此如何高效地将siRNAs转入细胞也是成功抑制基因表达的关键步骤。例如,一个siRNA分子对某特定基因的抑制效率为90%,而转染效率为10%,那么最后抑制蛋白表达最后的效率只有9%,可见如何提高siRNAs的导入效率非常重要。
3.1 RNAi转染优化-为了使得RNAi实验获得最大化的干扰效果,利用脂质体转染试剂技术,针对多种真核生物细胞进行转染参数的优化。RNAi 荧光标记的阴性对照、阳性对照可以用于进行转染效率的优化。
3.2 病毒侵染优化-针对难于转染细胞(特别是神经细胞、悬浮细胞、干细胞)和In vivo实验,基于的RNAi病毒载体构建、包装、浓缩等技术,利用腺病毒或慢病毒进行RNAi研究
3.3筛选RNAi稳定细胞株-利用抗生素来筛选稳定表达shRNA或miRNA的细胞株
4、RNAi干扰效果检测
用实时定量PCR方法检测mRNA水平的基因敲减效果;通过Wester blot方法检测蛋白水平的基因敲减效果
※ microRNA干扰载体构建
※ 原理
miRRNAi 表达载体采用Pol II启动子表达人工设计的微小RNA (miRNA), 后者从长的转录本被加工,进而导致特异性的mRNA的降解。利用其在分子和细胞生物学以及基因调节的专有技术,为选择好的靶标设计微小RNA (miRNA)序列,并将其克隆入Pol II miRRNAi 表达载体。
※ 服务流程
1 针对特定基因,设计B Pol II miRRNAi序列;合成该序列并退火生成双链DNA;
2 将DNA与pcDNA™6.2-GW/EmGFP-miR载体相连,连接物转化大肠杆菌
3 测定全长序列以鉴定miRNA序列的正确性
4 制备甘油菌
5 提供数据分析和报告给客户
※ 客户提供
只需提供您研究基因的ID
※ 我们提供
构建好的Pol II miRRNAi表达载体和相应的甘油菌;赠送阴性对照甘油菌
※ 质量保证
若您购买一套克隆(针对一个基因的不同位置设计4条miRNA序列),在转染效率>80%的前提下,我们保证至少有2个克隆可以达到至少70%转录水平的knockdown。
※ 服务价格:询价(四个克隆和一个阴性对照)
※ 完成时间:2周(10个工作日)