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Rat GAPDH F/Rat GAPDH R
2×Pfu PCR Colorless Mix
Human Bcl-2 F/Human Bcl-2 R
TNT® T7/SP6 Coup
D-Ribose D-核糖
HeLaScribe® Nucl
YeaRed Nucleic Acid 
Deoxyribonuclease I 
BenchTop φX174 DNA/
脱氧核糖核苷三磷酸溶
DIG-High Prime DNA LUNICON® qPCR SYBR® Green Master Mix (抗体法，High Rox)
产品信息
| 产品名称 | 产品编号 | 规格 | 储存 | 价格（元） |
| UNICON® qPCR SYBR Green Master Mix (抗体法，High Rox) | 11200ES03 | 1 ml | -20℃避光 | 196.00 |
| 11200ES08 | 5×1 ml | -20℃避光 | 586.00 |
产品描述
本产品是2×实时定量PCR扩增的预混合溶液。采用的抗体法热启动DNA聚合酶（货号：10113ES），在预变性温度（95℃）加热30sec，UNICON® Taq抗体失活，释放出Taq DNA Polymerase活性。抗体法热启动Taq酶可以有效抑制引物非特异性退火导致的扩增。同时，配方优化了有效抑制非特异性PCR扩增的因子和提升PCR反应扩增效率的因子，适合低浓度模板的扩增，使定量PCR可以在宽广的定量区域内获得良好的标准曲线。
Mix中含有Hieff® Taq DNA Polymerase、UNICON® Taq抗体、SYBR Green I、dNTPs、Mg2+及High Rox。使用时，仅需在扩增体系中加入模板和引物即可进行实时荧光定量PCR，大大简化操作过程，降低污染几率。
适用机型
Applied Biosystems: 5700, 7000, 7300, 7700, 7900HT FAST, StepOne, StepOne Plus.
运输与保存方式
冰袋运输。-20℃避光储存，有效期18个月。
本品避免反复冻融。产品中含有荧光染料SYBR Green I，保存或配制反应体系时需避免强光照射。
注意事项
1. 解冻后Master Mix可能出现絮状物质，4℃放置并上下颠倒混匀至溶液澄清，不影响试剂性能。
2. 推荐使用本公司cDNA合成试剂盒（货号：11123ES），以有效去除RNA样品中残留的基因组。
3. 为了您的安全和健康，请穿实验服并佩戴一次性手套操作。
反应体系（推荐冰上配制）
| 组分 | 体积（μl） | 体积（μl） | 终浓度 |
| UNICON® qPCR SYBR® Green Master Mix (抗体法，High Rox) | 25 | 10 | 1× |
| Forward Primer (10 μM) | 1 | 0.4 | 0.2 μM |
| Reverse Primer (10 μM) | 1 | 0.4 | 0.2 μM |
| 模板DNA | X | X | - |
| 无菌超纯水 | to 50 | to 20 | - |
【注】： 使用前务必充分混匀，避免剧烈震荡产生过多气泡。
a) 引物浓度：通常引物终浓度为0.2 μM，也可以根据情况在0.1-1.0 μM之间进行调整。
b) 模板浓度：如模板类型为未稀释cDNA原液，使用体积不应超过qPCR反应总体积的1/10。
c) 模板稀释：cDNA原液建议5-10倍稀释，最佳模板加入量以扩增得到的CT值在20-30个循环为好。
d) 反应体系：推荐使用20 μl或50 μl，以保证目的基因扩增的有效性和重复性。
e) 体系配制：请于超净工作台内配制，并使用无核酸酶残留的枪头、反应管；推荐使用带滤芯的枪头。避免交叉污染和气溶胶污染。
扩增程序（两步法） 扩增程序（三步法）
| 循环步骤 | 温度 | 时间 | 循环数 |
| 循环步骤 | 温度 | 时间 | 循环数 |
| 预变性 | 95℃ | 30 sec | 1 |
| 预变性 | 95℃ | 30 sec | 1 |
| 变性 | 95℃ | 10 sec | 40 |
| 变性 | 95℃ | 10 sec | 40 |
| 退火/延伸 | 60℃ | 30 sec★ |
| 退火 | 55-60℃ | 20 sec | ||
|
|
|
|
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| 延伸 | 72℃ | 20 sec★ | |
| 熔解曲线阶段 | 仪器默认设置 | 1 |
| 熔解曲线阶段 | 仪器默认设置 | 1 | ||
【注】高特异性可选择两步法，高效率扩增可选择三步法。
a) 预变性时间：本反应条件适合大多数基因扩增，如果遇到含有复杂结构的基因可适当增加预变性时间至3-5min。
b) 退火温度和时间：请根据引物和目的基因的长度进行调整。
c) 荧光信号采集（★）：请按照仪器使用说明书要求进行实验程序设置，几种常见仪器的时间设定如下：
30sec以上：Applied Biosystems: StepOne, StepOne Plus, 7500 Fast；Roche Applied Science: LightCycler 480；Bio-Rad: CFX96
31sec以上：Applied Biosystems: 7300
34sec以上：Applied Biosystems: 7500
d) 熔解曲线：通常情况下可以使用仪器默认程序。
结果分析
定量实验至少需要三个生物学重复。反应结束后需要确认扩增曲线及熔解曲线。
1) 扩增曲线：标准扩增曲线为S型。
Ct值落在20-30之间时，定量分析最准确；
Ct值小于10，需要将稀释模板后，重新进行实验；
Ct值介于30-35之间时，需要提高模板浓度，或者增大反应体系的体积，以提高扩增效率，保证结果分析的准确性；
Ct值大于35时，检测结果无法定量分析基因的表达量，但可用于定性分析。
2) 熔解曲线：
熔解曲线单峰，表明反应特异性好可以进行定量结果分析；若熔解曲线出现双峰或者多峰，则不能进行定量分析。
熔解曲线出现双峰，需要通过DNA琼脂糖凝胶电泳判断非目标峰是引物二聚体还是非特异性扩增。
如果是引物二聚体，建议降低引物浓度，或者重新设计扩增效率高的引物。
如果是非特异性扩增，请提高退火温度，或者重新设计更高特异性的引物。
引物设计指南
1）推荐引物长度25 bp左右。扩增产物长度150 bp为佳，可以在100 bp-300 bp内选择。
2）正向引物和反向引物的Tm值相差不宜超过2℃。引物Tm值60℃-65℃为佳。
3）引物碱基分布要均匀，避免出现连续的4个相同碱基，GC含量控制在50%左右。3’端最后一个碱基最好为G或C。
4）引物内部或者正反两条引物间最好避免出现有3个碱基以上的互补序列。
5）引物特异性需要用NCBI BLAST程序进行核对。避免引物3’端有2个碱基以上的非特异性互补。
6）设计完成的引物需要进行扩增效率的检测，只有具备相同扩增效率的引物才可用于定量比较分析。
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